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[默认分类] DNA sequence open reading frames (ORFs) | DNA序列的开放阅读框ORF预测

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  • TA的每日心情
    开心
    2021-12-13 21:45
  • 签到天数: 15 天

    [LV.4]偶尔看看III

    发表于 2018-3-26 09:41:28 | 显示全部楼层 |阅读模式
    常见的ORF预测工具
    Open Reading Frame Finder - NCBI
    ORF Finder - SMS
    OrfPredictor  - YSU
    基本概念
    开放阅读框(英语:Open reading frame;缩写:ORF;其他译名:开放阅读框架、开放读架等)是指在给定的阅读框架中,不包含终止密码子的一串序列。这段序列是生物个体的基因组中,可能作为蛋白质编码序列的部分。基因中的ORF包含并位于开始编码与终止编码之间。由于一段DNA或RNA序列有多种不同读取方式,因此可能同时存在许多不同的开放阅读框架。有一些计算机程序可分析出最可能是蛋白质编码的序列。
    关键词:
    1. 不包含终止密码子的一串序列;
    2. 可能作为蛋白质编码序列的部分;
    3. 有多种不同读取方式,因此可能同时存在许多不同的开放阅读框架;
    4. 有些工具会用blast比对来提高可信度
     
    示例
    一段5"-UCUAAAGGUCCA-3"序列。此序列共有3种读取法:

    UCU AAA GGU CCA
    CUA AAG GUC
    UAA AGG UCC

    由于UAA为终止编码,因此第三种读取法不具编译出蛋白质的潜力,故只有前两者为开放阅读框架
     
    个人当然是推荐使用NCBI大佬开发的工具的啦,发文章可信度高些。
    以下是Linux版该工具的说明:

    1. USAGE
    2.   ORFfinder [-h] [-help] [-xmlhelp] [-in Input_File] [-id Accession_GI]
    3.     [-b begin] [-e end] [-c circular] [-g Genetic_code] [-s Start_codon]
    4.     [-ml minimal_length] [-n nested_ORFs] [-strand Strand] [-out Output_File]
    5.     [-outfmt output_format] [-logfile File_Name] [-conffile File_Name]
    6.     [-version] [-version-full] [-dryrun]
    7. DESCRIPTION
    8.    Searching open reading frames in a sequence
    9. OPTIONAL ARGUMENTS
    10. -h
    11.    Print USAGE and DESCRIPTION;  ignore all other parameters
    12. -help
    13.    Print USAGE, DESCRIPTION and ARGUMENTS; ignore all other parameters
    14. -xmlhelp
    15.    Print USAGE, DESCRIPTION and ARGUMENTS in XML format; ignore all other
    16.    parameters
    17. -logfile <File_Out>
    18.    File to which the program log should be redirected
    19. -conffile <File_In>
    20.    Program"s configuration (registry) data file
    21. -version
    22.    Print version number;  ignore other arguments
    23. -version-full
    24.    Print extended version data;  ignore other arguments
    25. -dryrun
    26.    Dry run the application: do nothing, only test all preconditions
    27. *** Input query options (one of them has to be provided):
    28. -in <File_In>
    29.    name of file with the nucleotide sequence in FASTA format
    30.    (more than one sequence is allowed)
    31.    Default = `"
    32. -id <String>
    33.    Accession or gi number of the nucleotide sequence
    34.    (ignored, if the file name is provided)
    35.    Default = `"
    36. *** Query sequence details:
    37. -b <Integer>
    38.    Start address of sequence fragment to be processed
    39.    Default = `1"
    40. -e <Integer>
    41.    Stop address of sequence fragment to be processed (0 - to the end of the
    42.    sequence)
    43.    Default = `0"
    44. -c <Boolean>
    45.    Is the sequence circular? (t/f) *** Under development
    46.    Default = `false"
    47. *** Search parameters:
    48. -g <Integer>
    49.    Genetic code to use (1-31)
    50.    see https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Utils/wprintgc.cgi for details
    51.    Default = `1"
    52. -s <Integer>
    53.    ORF start codon to use:
    54.        0 = "ATG" only
    55.        1 = "ATG" and alternative initiation codons
    56.        2 = any sense codon
    57.    Default = `1"
    58. -ml <Integer>
    59.    Minimal length of the ORF (nt)
    60.    Value less than 30 is automatically changed by 30.
    61.    Default = `75"
    62. -n <Boolean>
    63.    Ignore nested ORFs (completely placed within another)
    64.    Default = `false"
    65. -strand <String>
    66.    Output ORFs on specified strand only (both|plus|minus)
    67.    Default = `both"
    68. *** Output options:
    69. -out <File_Out>
    70.    Output file name
    71. -outfmt <Integer>
    72.    Output options:
    73.        0 = list of ORFs in FASTA format
    74.        1 = CDS in FASTA format
    75.        2 = Text ASN.1
    76.        3 = Feature table
    77.    Default = `0"
    复制代码


      
    &nbsp;

    1. ORFfinder -in in.fasta -s 2 -ml 100 -out test.out -outfmt 3
    复制代码


      
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